大鼠肝微粒體制備過程中，活性保存是確保實驗結果可靠性的核心環節，其關鍵因素涵蓋從動物處理到最終保存的全流程控制，具體如下：

　　一、動物選擇與預處理

　　成年健康大鼠是制備高活性微粒體的基礎，因其肝臟代謝能力強、微粒體含量高。實驗前需禁食24小時以減少肝糖原干擾，提高回收率。若需誘導酶活性，可在處死前5天腹腔注射多氯聯苯（PCB），劑量為300mg/kg，以增強細胞色素P450等代謝酶的表達。

　　二、低溫操作與緩沖液優化

　　全程需在0-4℃冰浴環境中進行，避免酶熱變性。緩沖液需維持適宜離子強度與pH值，常用含0.25M蔗糖的磷酸鹽緩沖液或Tris-HCl緩沖液，并添加巰基乙醇等抗氧化劑防止脂質過氧化。此外，添加蛋白酶抑制劑可減少蛋白質降解，保護微粒體膜完整性。

　　三、組織破碎與離心分離

　　機械破碎時，采用超聲波或高壓均質機可更高效釋放微粒體，同時減少活性損失。離心是關鍵步驟，需通過差速離心法逐步分離：先以10,000g離心20分鐘去除細胞核和線粒體，再以40,000g離心90分鐘富集微粒體沉淀。離心條件需根據設備性能調整，避免過度離心導致膜結構破壞。

　　四、純化與儲存

　　密度梯度離心可進一步去除微囊泡等雜質，提高純度。復蘇時需用含20%甘油的緩沖鹽溶液輕柔混勻，避免泡沫產生。短期使用可保存于-80℃，長期保存則需液氮速凍，且需避免反復凍融，以維持酶活性。實驗表明，反復凍融超過10次的樣本會導致關鍵酶活衰減達34%。